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首页 > 商务会议 > 医疗医学会议 > CRISPR/Cas9基因靶向修饰技术培训班2019(5月成都班) 更新时间:2019-05-08T11:51:28

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CRISPR/Cas9基因靶向修饰技术培训班2019(5月成都班)
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CRISPR/Cas9基因靶向修饰技术培训班2019(5月成都班) 已截止报名

会议时间:2019-05-25 09:00至 2019-05-26 17:00结束

会议地点: 成都  港伦凯艺酒店  四川省成都市成华区华林三路8号,中国铁建广场三号楼 周边酒店预订

会议规模:50人

主办单位: 北京微旋基因技术有限公司

发票类型:增值税普通发票
领取方式:现场领取 
发票内容: 会议费 会务费 会议服务费 会议注册费 注册费 培训费 
参会凭证:现场凭电话姓名参会

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        会议通知

        会议内容 主办方介绍


        CRISPR/Cas9基因靶向修饰技术培训班2019(5月成都班)

        CRISPR/Cas9基因靶向修饰技术培训班2019(5月成都班)宣传图

        CRISPR/Cas9基因靶向修饰技术培训班

        邀请函

        尊敬的         :您好!

        CRISPR是生物科学领域的颠覆性技术,使用高效、迅速且简单,在生物医学研究领域引起一场巨变,并因此席卷全球实验室。研究人员利用它调整人类基因以消除疾病,创造生命力更加顽强的植物,并且消灭病原体。《Science》2017年度突破、《Nature》2017年度人物均授予了CRISPR相关技术的突破,CRISPR技术再一次成为生命科学的焦点。

        随着近几年的发展,研究者开发出越来越多基于CRISPR的新型基因编辑技术,例如CRISPRa/i,基因定位,表观遗传修饰,单碱基基因编辑系统(BE2,BE3,ABE等),CRISPR/C2c2基因突变检测系统等。CRISPR/Cas9系统的应用更加便捷、高效,也更广泛,目前该技术成功应用于人类细胞、斑马鱼、小鼠以及细菌的基因组精确修饰,成为科研人员的强大工具。为了让更多的科研人员及时全面的掌握CRISPR最新技术,获得基因编辑质粒系统。特于2019年5月25日至26日在港伦凯艺酒店(四川省成都市成华区华林三路8号,中国铁建广场三号楼)举办CRISPR/Cas9基因靶向修饰技术培训班。在带教教师的指导下,学员独立完成一系列全部实验,免费获得一份CRISPR/Cas9敲除质粒载体(可以用于哺乳动物、植物、真菌、细菌、斑马鱼、线虫等,共55种,见尾页)。 

        举办地点: 

        港伦凯艺酒店(四川省成都市成华区华林三路8号,中国铁建广场三号楼)

        参加对象

        从事医学、生命科学、农学等领域科研工作者和高校教师及研究生。

        授课方式

        理论讲授和实际操作紧密结合。每位学员在辅导教师的指导下,独立完成实验操作。


        承办单位:                                

        北京微旋基因技术有限公司

        举办时间:

        2019年5月25日至26日

        CRISPR/Cas9基因靶向修饰技术培训班


        CRISPR 质 粒 清 单

        Plant

        #50588

        pHSN401

        CRISPR/Cas based plant genome editing and gene regulation; expresses 3×FLAG-NLS-zCas9-NLS, gRNA scaffold for insertion of target sequence (AtU6-26 promoter), Hyg resistance

        #63142

        pRGEB32

        (Empty Backbone) Express sgRNA/PTG with rice snoRNA U3 promoter and Cas9 with rice ubiquitin promoter for Agrobacterium-mediated transformation.

        #51295

        pRGEB31

        (Empty Backbone) Binary vector derived from pRGE31. Deliver sgRNA and Cas9 into plant. by agrobacterium mediated transformation.

        Insect

        #49330

        pAc-sgRNA-Cas9

        Expresses sgRNA and Cas9-Puro in Drosophila S2 cells

        C.elegans

        #47549

        pDD162

        Cas9 + sgRNA plasmid that can be modified to cleave any Cas9 target site in the C. elegans genome.

        Yeast

        #43804

        p415

        Human Optimized S. pyogenes Cas9

        Bateria

        #42875

        pCRISPR

        A crRNA expression plasmid for targeting a specific sequence

        #84379

        pRH2502

        Expression of dcas9 D10A H840A from a TetR-regulated uvtetO promoter

        #84380

        pRH2521

        Expression of sgRNA from a imyc promoter (Pimyc)

        #61737

        pCRISPomyces-2

        Streptomyces expression of codon-optimized Cas9 and custom gRNA

        #42876

        pCas9

        Bacterial expression of Cas9 nuclease, tracrRNA and crRNA guide

        Zebrafish

        #47929

        pCS2-nCas9n

        expression of an optimized Cas9 for genome-editing in zebrafish
























        Mammalian

         

         

         

         

         

         

         

         

         

         

         

         

         

         

         

         

         

         

         

         

         

         

        #52970

        FokI-dCas9

        Expresses Fok1 nuclease domain fused to catalytically inactive Cas9 DNA-binding domain in mammalian cells

        #61591

        PX601

        A single vector AAV-Cas9 system containing Cas9 from Staphylococcus aureus (SaCas9) and its sgRNA.

        #42229

        PX260

        This plasmid separately encodes a human codon-optimized SpCas9, a tracrRNA and customizable crRNA.

        #42230

        PX330

        A human codon-optimized SpCas9 and chimeric guide RNA expression plasmid.

        #48138

        PX458[GFP]

        Cas9 from S. pyogenes with 2A-EGFP, and cloning backbone for sgRNA

        #48139

        PX459[Puromycin]

        Cas9 from S. pyogenes with 2A-Puro, and cloning backbone for sgRNA (V2.0)

        #48140

        PX461

        Cas9n (D10A nickase mutant) from S. pyogenes with 2A-EGFP, and cloning backbone for sgRNA

        #48141

        PX462[Cas9n,Puromycin]

        Cas9n (D10A nickase mutant) from S. pyogenes with 2A-Puro, and cloning backbone for sgRNA

        #50661

        pCW-Cas9[Tet-on,Puromycin]

        Inducible lentiviral expression of SpCas9

        #52963

        LentiGuide-puro-Vector

        Expresses S. pyogenes CRISPR chimeric RNA element with customizable sgRNA from U6 promoter and puromycin resistance from EF-1a promoter. Lentiviral backbone.

        #52962

        lentiCas9-Blast

        Expresses human codon-optimized S. pyogenes Cas9 protein and blasticidin resistance from EFS promoter. 3rd generation lentiviral backbone.

        #69982

        pY010 (pcDNA3.1-hAsCpf1)

         Expresses humanized AsCpf1

        #19319

        pLJM1-EGFP

        (Empty Backbone) 3rd gen lentiviral vector for EGFP fusion; PGK driven puromycin

        #12259

        pMD2.G

        VSV-G envelope expressing plasmid

        #12260

        psPAX2 

        Lentivirus package plasmids

        #61427

        lenti sgRNA(MS2)_zeo backbone

        (Empty Backbone) 3rd generation lenti sgRNA cloning backbone with MS2 loops at tetraloop and stemloop 2 and EF1a-zeo resistance marker. Contains BsmBI sites for insertion of spacer sequences.

        #61426

        lenti MS2-P65-HSF1_Hygro

        lenti vector encoding the MS2-P65-HSF1 activator helper complex with a 2A Hygro resistance marker (EF1a-MS2-p65-HSF1-2A-Hygro-WPRE)

        #61425


        lenti dCAS-VP64_Blast

        3rd generation lenti vector encoding dCAS9-VP64 with 2A Blast resistance marker (EF1a-NLS-dCas9(N863)-VP64-2A-Blast-WPRE)

        #71814

        eSpCas9(1.1)

        Expresses high specificity SpCas9. Px330-like plasmid.

        #47327

        pET-28b-Cas9-His

        For in vitro expression and purification of Cas9 protein

        #62934

        pET-NLS-Cas9-6xHis

        Expression of NLS-Cas9-6xHis in bacterial cells

        86840

        pJH373

        mamalian expression of AcrIIA2

        84750

        Lenti-AsCpf1-Blast

        Expresses human codon-optimized AsCpf1 protein and blasticidin resistance from EFS promoter. Lentiviral backbone.

        84752

        Lenti_gRNA-Puro

        (Empty Backbone) Expresses Cpf1 customizable sgRNA from U6 promoter and puromycin resistance from EF-1a promoter

        79145

        pCAG-eCas9-GFP-U6-gRNA

        All-in-one CRISPR/Cas9 vector with high-fidelity eSpCas9 expression in human pluripotent stem cells

        84745

        pY30

        Expresses huAsCpf1-P2A-puro and crRNA guide

        84743

        pY094

        Expresses huAsCpf1-T2A-GFP and crRNA guide

        84741

        pY026

        Expresses huAsCpf1 and crRNA guide

        60958

        PX552

        pAAV-U6sgRNA(SapI)_hSyn-GFP-KASH-bGH (SpGuide acceptor). AAV plasmid for sgRNA cloning. GFP-KASH fusion facilitates FACS sorting of cells and nuclei.

        79152

        pC003 - LshC2C2 locus into pACYC184 for spacer cloning

        LshC2c2 locus in pACYC184 with BsaI sites for spacer cloning

        79150

        pC001 - huLshC2C2-MBP for bacterial expression

        Expresses human codon-optimized LshC2c2 for purification in E. coli

        64324

        pU6-(BbsI)_CBh-Cas9-T2A-mCherry

        Expression vector for sgRNAs cloned into the BbsI sites and for expression of Cas9 linked to mCherry via a T2A peptide

        64222

        pU6-(BbsI)_CBh-Cas9-T2A-mcherry-P2A-Ad4E4orf6

        Expression vector for sgRNA and for Expression of Cas9 linked via T2A to mCherry linked to the Ad4 E4orf6 gene via P2A

        64218

        pU6-(BbsI)_CBh-Cas9-T2A-BFP-P2A-Ad4E1B

        Expression vector for sgRNA and for Expression of Cas9 linked to BFP via T2A linked to Ad4 E1B via P2A

        64323

        pU6-(BbsI)_CBh-Cas9-T2A-BFP

        Expression vector for sgRNAs cloned into the BbsI sites and for expression of Cas9 linked to BFP via a T2A peptide

        51023

        pSLQ1658-dCas9-EGFP

        Template for NLS-dCas9-NLS-EGFP fusion protein for CRISPR imaging (the recipient vector can be TetON 3G promoter system)

        64108

        pHAGE-TO-dCas9-3XmCherry

        Expression of Sp dCas9-3XmCherry in mammalian cells

        60957

        PX551

        pAAV-pMecp2-SpCas9-spA (AAV-SpCas9). AAV plasmid expressing Cas9 in neurons under control of truncated mecp2 promoter.

        100806

        BE4-Gam

        Expresses BE4-Gam in mammalian cells

        100809

        SaBE4-Gam

        Expresses SaBE4-Gam in mammalian cells

        102917

        pCMV-ABE7.8

        expresses ABE7.8 in mammalian cells

        102919

        pCMV-ABE7.10

        expresses ABE7.10 in mammalian cells

        108382

        xCas9(3.7)-ABE(7.10)

        Mammalian expression vector for xCas9(3.7)-ABE




        北京微旋基因技术有限公司

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        会议日程

        (最终日程以会议现场为准)


        课程安排:

        日期

        时间

        培训内容

        授课老师

        5


        24

        10:00-18:00

        培训报到

        刘刚博士

        2008年博士毕业于中国科学院上海生命科学研究院,从事肿瘤干细胞,细胞衰老,肿瘤转移等细胞作用网络和通路的研究,并作为骨干研究人员参加了973计划项目、国家自然科学基金重点项目、在香港中文大学做为作为Postdoc和Research fellow,从事研究工作。先后Nature Genetics,cell research、PLOS one等期刊发表论文十余篇。

        5


        25

        9:00-11:30

        理论讲解:

        一、基因编辑技术简介

        1.ZFN 2.TALEN 3.CRISPR

        二、CRISPR/Cas9基因编辑技术

        1.guide RNA序列设计

        2.靶基因序列查找

        3.sgRNA在线设计、特异性分析和效率验证

        4.不同物种sgRNA设计

        实验操作:

        一、CRISPR/Cas9基因表达载体克隆构建

        1.sgRNA设计合成

        2.敲除载体选择及线性化

        3.sgRNA连接,转化等

        13:00-17:00

        理论讲解

        一、CRISPR/Cas9转染策略

        1.生物转染 2.物理转染 3.化学转染 4.筛选策略选择

        二、脂质体转染,电转,病毒转导,显微注射等)

        三、Crispr/Cas9转染策略(植物,动物,原核生物)

        四、CRISPR/Cas9病毒系统选择

        实验操作:CRISPR/Cas9敲除质粒转染靶细胞

        5


        26

        9:00-11:30

        理论讲解:

        一、CRISPR技术应用解析

        1.基因敲除2.基因敲入3.CRISPR在转录调控中的应用4.CRISPR靶基因标记定位5.基因敲除小鼠模型构建策略

        二、CRISPR案例解析

        1.基因敲除小鼠模型构建2.植物基因敲除应用3.细菌,真菌等基因敲除应用

        三、Cripr基因脱靶分析及解决方案

        四、Crispr/Cas9与siRNA、shRNA

        实验操作:

        1.CRISPR/Cas9转染后靶DNA检测

        2.靶基因修饰位点扩增及鉴定

        13:00-17:00

        理论讲解:

        一、单碱基基因编辑技术

        1.HF2-BE2 2.BE3系统 3.ABE系统。

        二、CRISPR-Cpf1系统介绍

        三、CRISPR-C2c2系统介绍

        四、多靶点sgRNA载体构建策略

        五、Crispr/Cas9系统在肿瘤和遗传病治疗中应用解析

        实验操作:

        1. CRISPR基因敲除效果检测

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        会议嘉宾


        即将更新,敬请期待

        参会指南

        会议门票 场馆介绍


        收费标准

        注册费: 2800元/人,2019年5月18号之前汇款+报名可以优惠至:2600元/人。

        包括学费、资料费、试剂耗材费、其他材料费;免费提供工作午餐,可协助安排住宿,住宿费用自理。

        推荐住宿地点:港伦港艺酒店   278元/大床,278/标间。

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        温馨提示
        酒店与住宿: 为防止极端情况下活动延期或取消,建议“异地客户”与活动家客服确认参会信息后,再安排出行与住宿。
        退款规则: 活动各项资源需提前采购,购票后不支持退款,可以换人参加。

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