• 参会报名
  • 会议通知
  • 会议日程
  • 会议嘉宾
  • 参会指南
  • 邀请函下载

首页 > 商务会议 > 医疗医学会议 > 2019CRISPR/Cas9基因靶向修饰技术培训班(8月北京班) 更新时间:2019-07-11T15:04:16

大会站点分布:
(点击可切换)
2019CRISPR/Cas9基因靶向修饰技术培训班(8月北京班)
收藏3人
分享到

2019CRISPR/Cas9基因靶向修饰技术培训班(8月北京班)

会议时间:2019-08-10 09:00至 2019-08-11 17:00结束

会议地点: 北京  北京理工大学国际教育交流中心  海淀区北三环西路66号

会议规模:50人

主办单位: 北京微旋基因技术有限公司

推荐会议:GMIC 2019 广州 全球移动互联网大会(超序之美)

发票类型:增值税普通发票
领取方式:现场领取 
发票内容: 会议费 会务费 会议服务费 会议注册费 注册费 培训费 
参会凭证:现场凭电话姓名参会

会议通知

会议内容 主办方介绍


2019CRISPR/Cas9基因靶向修饰技术培训班(8月北京班)

2019CRISPR/Cas9基因靶向修饰技术培训班(8月北京班)宣传图

CRISPR/Cas9基因靶向修饰技术培训班

邀请函

 

尊敬的         :您好!

       CRISPR是生物科学领域的颠覆性技术,使用高效、迅速且简单,在生物医学研究领域引起一场巨变,并因此席卷全球实验室。研究人员利用它调整人类基因以消除疾病,创造生命力更加顽强的植物,并且消灭病原体。《Science》2017年度突破、《Nature》2017年度人物均授予了CRISPR相关技术的突破,CRISPR技术再一次成为生命科学的焦点。

随着近几年的发展,研究者开发出越来越多基于CRISPR的新型基因编辑技术,例如CRISPRa/i,基因定位,表观遗传修饰,单碱基基因编辑系统(BE2,BE3,ABE等),CRISPR/C2c2基因突变检测系统等。CRISPR/Cas9系统的应用更加便捷、高效,也更广泛,目前该技术成功应用于人类细胞、斑马鱼、小鼠以及细菌的基因组精确修饰,成为科研人员的强大工具。

       为了让更多的科研人员及时全面的掌握CRISPR最新技术,获得基因编辑质粒系统。特于2019年8月10日至11日在北京理工大学国际教育交流中心(海淀区北三环西路66号)举办CRISPR/Cas9基因靶向修饰技术培训班。在带教教师的指导下,学员独立完成一系列全部实验,免费获得一份CRISPR/Cas9敲除质粒载体(可以用于哺乳动物、植物、真菌、细菌、斑马鱼、线虫等,共55种,见尾页)。

举办时间:

2019年8月10日至11日

举办地点:

北京理工大学国际教育交流中心(海淀区北三环西路66号)

参加对象

从事医学、生命科学、农学等领域科研工作者和高校教师及研究生。

授课方式

理论讲授和实际操作紧密结合。每位学员在辅导教师的指导下,独立完成实验操作。

承办单位:                                

北京微旋基因技术有限公司

CRISPR 质 粒 清 单

Plant

#50588

pHSN401

CRISPR/Cas based plant genome editing and gene regulation; expresses 3×FLAG-NLS-zCas9-NLS, gRNA scaffold for insertion of target sequence (AtU6-26 promoter), Hyg resistance

#63142

pRGEB32

(Empty Backbone) Express sgRNA/PTG with rice snoRNA U3 promoter and Cas9 with rice ubiquitin promoter for Agrobacterium-mediated transformation.

#51295

pRGEB31

(Empty Backbone) Binary vector derived from pRGE31. Deliver sgRNA and Cas9 into plant. by agrobacterium mediated transformation.

Insect

#49330

pAc-sgRNA-Cas9

Expresses sgRNA and Cas9-Puro in Drosophila S2 cells

C.elegans

#47549

pDD162

Cas9 + sgRNA plasmid that can be modified to cleave any Cas9 target site in the C. elegans genome.

Yeast

#43804

p415

Human Optimized S. pyogenes Cas9

Bateria

#42875

pCRISPR

A crRNA expression plasmid for targeting a specific sequence

 

#84379

pRH2502

Expression of dcas9 D10A H840A from a TetR-regulated uvtetO promoter

#84380

pRH2521

Expression of sgRNA from a imyc promoter (Pimyc)

#61737

pCRISPomyces-2

Streptomyces expression of codon-optimized Cas9 and custom gRNA

#42876

pCas9

Bacterial expression of Cas9 nuclease, tracrRNA and crRNA guide

Zebrafish

#47929

pCS2-nCas9n

expression of an optimized Cas9 for genome-editing in zebrafish

Mammalian

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

#52970

FokI-dCas9

Expresses Fok1 nuclease domain fused to catalytically inactive Cas9 DNA-binding domain in mammalian cells

#61591

PX601

A single vector AAV-Cas9 system containing Cas9 from Staphylococcus aureus (SaCas9) and its sgRNA.

#42229

PX260

This plasmid separately encodes a human codon-optimized SpCas9, a tracrRNA and customizable crRNA.

#42230

PX330

A human codon-optimized SpCas9 and chimeric guide RNA expression plasmid.

#48138

PX458[GFP]

Cas9 from S. pyogenes with 2A-EGFP, and cloning backbone for sgRNA

#48139

PX459[Puromycin]

Cas9 from S. pyogenes with 2A-Puro, and cloning backbone for sgRNA (V2.0)

#48140

PX461

Cas9n (D10A nickase mutant) from S. pyogenes with 2A-EGFP, and cloning backbone for sgRNA

#48141

PX462[Cas9n,Puromycin]

Cas9n (D10A nickase mutant) from S. pyogenes with 2A-Puro, and cloning backbone for sgRNA

#50661

pCW-Cas9[Tet-on,Puromycin]

Inducible lentiviral expression of SpCas9

#52963

LentiGuide-puro-Vector

Expresses S. pyogenes CRISPR chimeric RNA element with customizable sgRNA from U6 promoter and puromycin resistance from EF-1a promoter. Lentiviral backbone.

#52962

lentiCas9-Blast

Expresses human codon-optimized S. pyogenes Cas9 protein and blasticidin resistance from EFS promoter. 3rd generation lentiviral backbone.

#69982

pY010 (pcDNA3.1-hAsCpf1)

 Expresses humanized AsCpf1

#19319

pLJM1-EGFP

(Empty Backbone) 3rd gen lentiviral vector for EGFP fusion; PGK driven puromycin

#12259

pMD2.G

VSV-G envelope expressing plasmid

#12260

psPAX2 

Lentivirus package plasmids

#61427

lenti sgRNA(MS2)_zeo backbone

(Empty Backbone) 3rd generation lenti sgRNA cloning backbone with MS2 loops at tetraloop and stemloop 2 and EF1a-zeo resistance marker. Contains BsmBI sites for insertion of spacer sequences.

#61426

lenti MS2-P65-HSF1_Hygro

lenti vector encoding the MS2-P65-HSF1 activator helper complex with a 2A Hygro resistance marker (EF1a-MS2-p65-HSF1-2A-Hygro-WPRE)

#61425


lenti dCAS-VP64_Blast

3rd generation lenti vector encoding dCAS9-VP64 with 2A Blast resistance marker (EF1a-NLS-dCas9(N863)-VP64-2A-Blast-WPRE)

#71814

eSpCas9(1.1)

Expresses high specificity SpCas9. Px330-like plasmid.

#47327

pET-28b-Cas9-His

For in vitro expression and purification of Cas9 protein

#62934

pET-NLS-Cas9-6xHis

Expression of NLS-Cas9-6xHis in bacterial cells

86840

pJH373

mamalian expression of AcrIIA2

84750

Lenti-AsCpf1-Blast

Expresses human codon-optimized AsCpf1 protein and blasticidin resistance from EFS promoter. Lentiviral backbone.

84752

Lenti_gRNA-Puro

(Empty Backbone) Expresses Cpf1 customizable sgRNA from U6 promoter and puromycin resistance from EF-1a promoter

79145

pCAG-eCas9-GFP-U6-gRNA

All-in-one CRISPR/Cas9 vector with high-fidelity eSpCas9 expression in human pluripotent stem cells

84745

pY30

Expresses huAsCpf1-P2A-puro and crRNA guide

84743

pY094

Expresses huAsCpf1-T2A-GFP and crRNA guide

84741

pY026

Expresses huAsCpf1 and crRNA guide

60958

PX552

pAAV-U6sgRNA(SapI)_hSyn-GFP-KASH-bGH (SpGuide acceptor). AAV plasmid for sgRNA cloning. GFP-KASH fusion facilitates FACS sorting of cells and nuclei.

79152

pC003 - LshC2C2 locus into pACYC184 for spacer cloning

LshC2c2 locus in pACYC184 with BsaI sites for spacer cloning

79150

pC001 - huLshC2C2-MBP for bacterial expression

Expresses human codon-optimized LshC2c2 for purification in E. coli

64324

pU6-(BbsI)_CBh-Cas9-T2A-mCherry

Expression vector for sgRNAs cloned into the BbsI sites and for expression of Cas9 linked to mCherry via a T2A peptide

64222

pU6-(BbsI)_CBh-Cas9-T2A-mcherry-P2A-Ad4E4orf6

Expression vector for sgRNA and for Expression of Cas9 linked via T2A to mCherry linked to the Ad4 E4orf6 gene via P2A

64218

pU6-(BbsI)_CBh-Cas9-T2A-BFP-P2A-Ad4E1B

Expression vector for sgRNA and for Expression of Cas9 linked to BFP via T2A linked to Ad4 E1B via P2A

64323

pU6-(BbsI)_CBh-Cas9-T2A-BFP

Expression vector for sgRNAs cloned into the BbsI sites and for expression of Cas9 linked to BFP via a T2A peptide

51023

pSLQ1658-dCas9-EGFP

Template for NLS-dCas9-NLS-EGFP fusion protein for CRISPR imaging (the recipient vector can be TetON 3G promoter system)

64108

pHAGE-TO-dCas9-3XmCherry

Expression of Sp dCas9-3XmCherry in mammalian cells

 

60957

PX551

pAAV-pMecp2-SpCas9-spA (AAV-SpCas9). AAV plasmid expressing Cas9 in neurons under control of truncated mecp2 promoter.

 

100806

BE4-Gam

Expresses BE4-Gam in mammalian cells

 

100809

SaBE4-Gam

Expresses SaBE4-Gam in mammalian cells

 

102917

pCMV-ABE7.8

expresses ABE7.8 in mammalian cells

 

102919

pCMV-ABE7.10

expresses ABE7.10 in mammalian cells

 

108382

xCas9(3.7)-ABE(7.10)

Mammalian expression vector for xCas9(3.7)-ABE

查看更多

会议日程

(最终日程以会议现场为准)


课程安排:

日期

时间

培训内容

授课老师

8月9日

10:00-18:00

培训报到

刘刚博士

8月10日

9:00-11:30

理论讲解:

一,基因编辑技术简介

1.ZFN 2.TALEN 3.CRISPR

二,CRISPR / Cas9基因编辑技术

1.guide RNA序列设计

2.靶基因序列查找

3.sgRNA在线设计,特异性分析和效率验证

4.不同物种因组设计

实验操作:

一,CRISPR / Cas9基因表达载体克隆构建

1.sgRNA设计合成

2.敲除载体选择及线性化

3.sgRNA连接,转化等

13:00-17:00

理论讲解

一,CRISPR / Cas9转染策略

1.生物转染2.物理转染3.化学转染4.筛选策略选择

二,脂质体转染,电转,病毒转导,显微注射等)

三,CRISPR / Cas9转染策略(植物,动物,原核生物)

四,CRISPR / Cas9病毒系统选择

实验操作:CRISPR / Cas9敲除质粒转染靶细胞

8月11日

9:00-11:30

理论讲解:

一,CRISPR技术应用解析

1.基因敲除2.基因敲入3.CRISPR在转录调控中的应用4.CRISPR靶基因标记定位5.基因敲除小鼠模型构建策略

二,CRISPR案例解析

1.基因敲除小鼠模型构建2.植物基因敲除应用3.细菌,真菌等基因敲除应用

三,Cripr基因脱靶分析及解决方案

四,CRISPR / Cas9与siRNA的,shRNA的

实验操作:

1.CRISPR / Cas9转染后靶DNA检测

2.靶基因修饰位点扩增及鉴定

13:00-17:00

理论讲解:

一,单碱基基因编辑技术

1.HF2-BE2 2.BE3系统3.ABE系统。

二,CRISPR-Cpf1系统介绍

三,CRISPR-C2C2系统介绍

四,多靶点因组载体构建策略

五,CRISPR / Cas9系统在肿瘤和遗传病治疗中应用解析

实验操作:

1.  CRISPR基因敲除效果检测

查看更多

会议嘉宾

(最终出席嘉宾以会议现场为准)


授课老师

刘刚博士

2008年博士毕业于中国科学院上海生命科学研究院,从事肿瘤干细胞,细胞衰老,肿瘤转移等细胞作用网络和通路的研究,并作为骨干研究人员参加了973计划项目、国家自然科学基金重点项目、在香港中文大学做为作为Postdoc和Research fellow,从事研究工作。先后Nature Genetics,cell research、PLOS one等期刊发表论文十余篇。

查看更多

参会指南

会议门票 场馆介绍


收费标准

注册费: 2800元/人,2019年8月1号之前汇款+报名可以优惠至:2600元/人。

包括学费、资料费、试剂耗材费、其他材料费;免费提供工作午餐,可协助安排住宿,住宿费用自理。

推荐住宿地点:如家快捷酒店(北京苏州桥人民大学店) 433元/大床,467/标间。

速八酒店苏州桥店342元/大床、376元/标间。  

北京理工大学国际教育交流中心360元/标间。

查看更多

温馨提示
酒店与住宿: 为防止极端情况下活动延期或取消,建议“异地客户”与活动家客服确认参会信息后,再安排出行与住宿。
退款规则: 活动各项资源需提前采购,购票后不支持退款,可以换人参加。

活动家为本会议官方合作
报名平台,您可在线购票

会议支持:

  • 会员折扣
    该会议支持会员折扣
    具体折扣标准请参见plus会员页面
  • 会员返积分
    每消费1元累积1个会员积分。
    仅PC站支持。
  • 会员积分抵现
    根据会员等级的不同,每抵用1元可使用的积分也不一样,具体可参见PLUS会员页面。 仅PC站支持。

会议地点 查看大图

部分参会单位

主办方没有公开参会单位

快捷下单

活动家_小程序快捷下单

微信扫一扫
使用小程序快捷下单

送礼神器

邮件提醒通知

分享到微信 ×

打开微信,点击底部的“发现”,
使用“扫一扫”即可将网页分享至朋友圈。

录入信息

请录入信息,方便生成邀请函